电捕鱼即利用鱼在水中受到一定强度电场刺激会出现昏迷、休克进行捕鱼。当水中电流停止后，鱼类会不同程度地缓慢恢复正常。若电场强度超过鱼的承受能力，且时间过长，鱼就会死亡。1975年，浙江省淡水水产研究所对电捕鱼进行了初步调查，结果显示电击的鱼不会死，电击后的鱼能够正常生长繁殖，电捕对其他水产资源无显著影响［1］。马师荟［2］进行了电击对黄颡鱼机体影响的研究。蔡厚才［3］初步探讨了鲫在强直流电场中的麻醉、击昏反应特性。柯福恩等［4］进行了几种淡水鱼类对水中交流电场强度反应的试验。在交流电作用下，随着电场强度的增大和通电时间的延长，鱼将会先后出现感电、定向、麻醉和击昏反应四种典型的行为，有关这方面的研究已有大量的报道［5-6］，但其研究方法至今仍未能统一，而且实验条件难以完全控制，故各种实验结果往往出入较大，尤以麻醉、击昏反应更为突出。此外，在以往的研究中，大多数均侧重于各反应强度阈值的测定［7］。电捕鱼究竟对鱼类资源有多大的影响，特别是对鱼类的繁殖有何影响，目前还没有充分的依据来证明。本实验选取我国特有的小型鱼类稀有 鲫(Gobiocypris rarus)作为试验对象，研究了单次和隔天连续电刺激对稀有 鲫精子寿命的影响，为进一步研究电刺激的雌雄差异机制提供借鉴。
1 材料与方法
1.1 实验动物
稀有 鲫为实验室养殖的性成熟个体，约200尾，体长3.5～4.0 cm，饲养于自制的恒温循环水养殖系统。养殖中模拟自然光周期，水温控制在(23±1)℃。每天定时投喂两次，8∶00投喂人工饲料，18∶00投喂丰年虫。
1.2 实验方法
1.2.1 电刺激方法
电刺激采用自制的电刺激仪，可以显示刺激的电压、电流和电击时间。由于自制的电刺激仪采用匀强电场原理制作，可以使水域中每一个位置的电压与电流都相同，刺激设定的电压为75V，电流280 mA，持续电击5 500 ms，使鱼既能达到休克昏迷状态，又能在几分钟内苏醒。
1.2.2 精液采集方法
取材前先用蒸馏水清洗雄鱼的生殖孔，并擦掉其周围的水分。用浸湿的纱布包裹实验鱼的头部，从前到后轻轻推挤鱼腹两侧，用毛细管将挤出的精液吸取在管内，精液要求无水、无尿、无血、无粪便、乳白色、遇水后迅速散开［8］。
1.2.3 精子寿命测定
根据稀有 鲫精子的活动状态，可将其运动过程分为:快速运动、中速运动、慢速运动、原地颤动。精子活力判断依据文献［8］的划分标准:以视野中有70%左右精子由前一运动阶段转入后一运动阶段时，认为该批精子已进入下一运动阶段。精子的寿命为为快速运动时间和中速运动时间及原地颤动时间之和。实验时用吸管滴一滴养殖用水于载玻片上，调节普通光学显微镜(10×)至视野清晰可见。然后用干净的解剖针挑取少许精液于水滴中调匀，同时按下秒表计时并同时观察精子的运动情况。本实验仅记录精子寿命，观察以一个视野为准，每一尾雄鱼的精子寿命测定3次。
1.2.4 繁殖时段和非繁殖时段精子寿命差异的测定方法
根据稀有 鲫在20∶00以后产卵的习性，推测其具有日变化规律。但由于稀有 鲫属于小型鱼类，无法每隔2～3 h就取样，因此我们选择了11∶00和20∶00作为开始测定时间，在30 min内测定完毕，以研究其是否有差异。
将9尾性成熟的稀有 鲫雄鱼随机分为3组，每组3尾，不进行电刺激。在第一天的20∶00和第二天的11∶00测定精子寿命。为了确认第一次取样是否对第二次测定结果有影响，另选9尾性成熟的稀有 鲫雄鱼，也随机分为3组，每组3尾，不进行电刺激。但测定先后不同，第一次测定时间是11∶00，第二次是当天的 20∶00。
1.2.5单次电刺激对精子寿命的影响
A组，将33尾性成熟的稀有 鲫雄鱼放在同一个鱼缸中训养一周，在20∶00随机抽取3尾作对照测定其精子寿命，再对余下的30尾雄鱼进行一次电刺激，使其达到休克昏迷状态，2 min后，待其恢复苏醒后，立即随机取3尾进行精子寿命测定，以后每隔3 h随机取3尾进行精子寿命测定，持续24 h。
同样的方式，另设一组，为B组，差异只是进行电刺激的时间是在11∶00。
1.2.6连续电刺激对精子寿命的影响
取6尾稀有 鲫雄鱼，随机分为2组，分别为对照组(不电击)，连续电击组(每隔1 d电击1次，0 d，2 d，4 d的20∶00各电击1次)。23∶00测定精子寿命，共测定6 d。 上一篇：公孙树银杏的保护措施 下一篇：没有了